Katedry i Zespoły Badawcze
Zespół Badawczy Biotechnologii Roślin
Instytut Biologii Uniwersytetu Szczecińskiego
ul. Wąska 13, II piętro
71-415 Szczecin
Lider Zespołu Badawczego
dr Anna Kujawska
adiunkt
telefon: 91 444 16 95
e-mail: anna.kujawska@usz.edu.pl
ul. Wąska 13, p. 220
dr Paulina Król
adiunkt
telefon: 91 444 16 94
e-mail: paulina.krol@usz.edu.pl
ul. Wąska 13, p. 221
dr Piotr Karczyński
adiunkt
telefon: 91 444 16 94
e-mail: piotr.karczynski@usz.edu.pl
ul. Wąska 13, p. 221
mgr Oleksandra Laban
starszy technik
telefon: 91 444 15 27
e-mail: oleksandra.laban@usz.edu.pl
ul. Wąska 13, p. 118
Zespół Biotechnologii Roślin bada molekularne, fizjologiczne i epigenetyczne mechanizmy rozwoju, regeneracji oraz odpowiedzi roślin na różnorodne czynniki środowiskowe. Prace obejmują wpływ fitohormonów i sygnałów wewnątrzkomórkowych oraz regulację ekspresji genów na poziomie genetycznym i epigenetycznym na różnicowanie tkanek i rozwój roślin w kulturach in vitro, ze szczególnym uwzględnieniem somatycznej embriogenezy u roślin z rodziny bobowatych.
Kolejnym obszarem pracy są interakcje roślina–mikroorganizm, w tym wpływ bakterii promujących wzrost roślin (PGPR) na procesy fizjologiczne w roślinach, ze szczególnym uwzględnieniem aktywacji genów odporności roślin ograniczanie rozwoju patogenów glebowych. Prace te pozwalają na określenie molekularnych podstaw odporności indukowanej oraz opracowanie strategii biotechnologicznych poprawiających właściwości użytkowe roślin i ich zdolność adaptacyjną. Prowadzone są także badania nad odpornością materiałów na działanie mikroorganizmów. Analizowany jest wpływ bakterii oraz grzybów strzępkowych na materiały techniczne, w tym na materiały polimerowe oraz kompozyty z wypełniaczem organicznym pochodzenia roślinnego.
Celem zespołu jest kompleksowe zrozumienie mechanizmów molekularnych, epigenetycznych i fizjologicznych warunkujących rozwój, regenerację oraz odporność roślin, co stanowi podstawę dla rozwoju nowoczesnych metod biotechnologii roślin. Bardzo istotne jest również praktyczne zastosowanie wiedzy we współpracy z innymi dziedzinami nauki oraz przemysłem.
- „Flora In Vitro” – Biobank zagrożonych gatunków roślin Pomorza Zachodniego
- Identification of SUMO Proteins and Their Expression Profile During Induction of Somatic Embryogenesis in Medicago truncatula Anna Kujawska and Paulina Król. International Journal of Molecular Sciences. 2025 s.1-15 DOI: 10.3390/ijms26178133
- KAR1-dormancy release in Avena fatua caryopses includes increased AfMAN gene expression and ENDO-β-MANNANASE activity in the coleorhiza and radicle. Anna Orłowska, Jan Kępczyński. Journal of Plant Physiology. 2024 s.1-6 DOI: 10.1016/j.jplph.2024.154363
- Two Medicago truncatula growth-promoting rhizobacteria capable of limiting in vitro growth of the Fusarium soil-borne pathogens modulate defense genes expression. Piotr Karczyński, Anna Orłowska, Ewa Kępczyńska. Planta: an International Journal of Plant Biology. 2023 s.1-19 DOI: 10.1007/s00425-023-04145-9
- Prime Editing : nowa metoda edycji genów. Dalia Blicharska, Izabela Szućko-Kociuba, Ewa Filip, Anna Orłowska, Lidia Skuza. Postępy Biochemii = Advanes in Biochemistry. 2023 s.146-158 DOI: 10.18388/pb.2021_494
- Profiles of endogenous ABA, bioactive GAs, IAA and their metabolites in Medicago truncatula non-embryogenic and embryogenic tissues during induction phase in relation to somatic embryo formation. Ewa Kępczyńska, Anna Orłowska. Planta: an International Journal of Plant Biology. 2021, vol. 253 iss.3 DOI: 10.1007/s00425-021-03582-8
- Involvement of O2− in the regulation of Polycomb, Trithorax and LEC1, L1L, WUS, WOX5, STM gene expression during somatic embryogenesis induction in M. truncatula. Anna Orłowska, Ewa Kępczyńska. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2020, vol. 142 iss. 1, s.201-212 DOI: 10.1007/s11240-020-01854-x
- Oxidative status in Medicago truncatula non-embryogenic and embryogenic tissues with particular reference to somatic embryogenesis. Anna Orłowska, Ewa Kępczyńska. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2020, vol. 140 iss. 1, s.35-48
- Medicago truncatula root developmental changes by growth-promoting microbes isolated from Fabaceae, growing on organic farms, involve cell cycle changes and WOX5 gene expression. Kępczyńska E, Karczyński P. Planta. 2019, 251(1):25. DOI: 10.1007/s00425-019-03300-5. PMID: 31784832
- Identification of Polycomb Repressive Complex1, Trithorax group genes and their simultaneous expression with WUSCHEL, WUSCHEL-related Homeobox5 and SHOOT MERISTEMLESS during the induction phase of somatic embryogenesis in Medicago truncatula Anna Orłowska, Ewa Kępczyńska. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2018, vol. 134 iss. 3, s.345-356 DOI: 10.1007/s11240-018-1425-6
- Identification of LEC1, L1L and Polycomb Repressive Complex 2 genes and their expression during the induction phase of Medicago truncatula somatic embryogenesis. Anna Orłowska, Rafał Igielski, Katarzyna Łagowska, Ewa Kępczyńska. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2017, vol. 129 iss. 1, s.119-132 DOI: 10.1007/s11240-016-1161-8
- Priming of seeds with methyl jasmonate induced resistance to hemi-biotroph Fusarium oxysporum sp. lycopersici in tomato via 12-oxo-phytodienoic acid, salicylic acid, and flavonol accumulation. Paulina Król, Rafał Igielski, Stephan Pollmann, Ewa Kępczyńska. Journal of Plant Physiology. 2015, vol. 179, s.122-132 DOI: 10.1016/j.jplph.2015.01.018
- Enhancement of Festuca rubra L. germination and seedling growth by seed treatment with pathogenic Agrobacterium rhizogenes. Paulina Król, Jolanta Adamska, Ewa Kępczyńska. Acta Physiologiae Plantarum. 2014, vol. 36 iss. 12, s.3263-3274 DOI: 10.1007/s11738-014-1692-8
ZESPÓŁ BADAWCZY BIOTECHNOLOGII ROŚLIN
Instytut Biologii
ul. Wąska 13,
71-412 Szczecin
e-mail: anna.kujawska@usz.edu.pl
